design baju kaos

A.

B. 

C. 

D. 

E. 

F. 

BEM AAK-BL

Kasus Vibrio parahaemolyticus Pada Seafood

Nama : Donny Sagita
Nim    : Ak 412012
Akademi Analis Kesehatan Borneo Lestari

          Vibrio parahaemolyticus (Vp) adalah bakteri halofilik Gram negatif yang merupakan flora normal dari daerah estuaria dan pantai. Bakteri ini tumbuh pada kadar NaCl optimum 3%, kisaran suhu 5 – 43°C, pH 4.8 – 11 dan aw 0.94 – 0.99. Pertumbuhan berlangsung cepat pada kondisi suhu optimum (37°C) dengan waktu generasi hanya 9–10 menit. Seafood yang merupakan produk hasil laut, memberikan semua kondisi yang dibutuhkan oleh Vp untuk tumbuh dan berkembang biak: keberadaan garam, nutrien yang baik serta pH dan aw yang cocok sehingga Vp sering terdapat sebagai flora normal di dalam seafood.

           Vp muncul secara musiman. Biasanya, pada musim panas Vp relatif mudah dideteksi pada air laut, sedimen, plankton, ikan, krustasea dan moluska yang merupakan tempat hidupnya di ekosistem. Mereka terkonsentrasi dalam saluran pencernaan moluska, seperti kerang, tiram dan mussel yang mendapatkan makanannya dengan cara mengambil dan menyaring air laut.

           Beberapa strain dari bakteri Vp, bersifat patogen dan merupakan penyebab utama dari penyakit gastroenteritis yang disebabkan oleh produk hasil laut (seafood), terutama yang dimakan mentah, dimasak tidak sempurna atau terkontaminasi dengan seafood mentah setelah pemasakan. Gastroenteritis berlangsung akut, diare yang tiba-tiba dan kejang perut yang berlangsung selama 48 – 72 jam. Masa inkubasi berkisar antara 8 – 72 jam dengan rata-rata sekitar 18 jam. Gejala lain yang dilaporkan dengan frekuensi yang berturut-turut menurun adalah mual, muntah, sakit kepala dan badan panas dingin. Pada sebagian kecil kasus, bakteri menyebabkan kerusakan (luka) pada mukosa usus sehingga tinja dari beberapa penderita selain mengandung bakteri, juga berdarah dan mengandung leukosit serta memicu terjadinya septisemia.

           Sejak tahun 1997, jumlah kasus Kejadian Luar Biasa (KLB) yang disebabkan oleh Vp meningkat secara tajam di berbagai kawasan dunia. Terjadinya KLB ini telah teridentifikasi disebabkan oleh konsumsi seafood terutama tiram (oyster) mentah yang terkontaminasi oleh Vp. Sejak tahun 1997 tersebut, maka seafood terutama tiram dianggap sebagai jenis pangan yang penting diwaspadai dari aspek keamanan pangan. Strain Vp patogen penyebab gastroenteritis sangat beragam. Strain Vp patogen dengan serotype O3:K6 sejak tahun 1996 muncul menjadi sumber patogen baru penyebab keracunan pangan.

            Kasus keracunan karena mengkonsumsi pangan tercemar Vp, biasanya berlangsung secara musiman. Karena Vp biasanya muncul pada saat suhu lingkungan perairan di atas 15°C, maka kasus keracunan karena Vp biasa terjadi pada musim panas dimana suhu permukaan laut naik hingga mencapai di atas 15°C. Kasus keracunan karena Vp lebih banyak terjadi pada musim panas. Kondisi ini berkorelasi positif dengan prevalensi dan jumlah kontaminasi Vp pada sampel seafood lingkungan yang juga meningkat dengan meningkatnya suhu perairan. Tingkat salinitas air laut juga berpengaruh pada tingkat kontaminasi.

           Teknik analisis berpengaruh pada tingkat prevalensi dan tingkat isolasi Vp dari seafood. Untuk pengendalian tingkat kontaminasi didalam seafood, diperlukan pemilihan metode analisis yang lebih sensitifitas dengan waktu deteksi yang lebih cepat. Teknik analisis berdasarkan deteksi gen (tlh, tdh dan/atau trh) memberikan hasil yang lebih akurat untuk mendeteksi strain patogen dibandingkan dengan teknik MPN-konvensional yang berdasarkan pada reaksi biokimiawi.

            Beberapa faktor yang akan dilihat adalah faktor lingkungan, teknik analisis yang digunakan serta aspek penyimpanan dan penanganan seafood. Diharapkan, kajian ini dapat menjelaskan keterkaitan antara frekuensi isolasi Vp dari dalam seafood dengan beberapa faktor yang mempengaruhinya dan dapat menjadi bahan masukan untuk pengembangan metode atau teknik pengendalian yang efisien untuk mengurangi resiko kontaminasi Vp dan menjamin keamanan pangan.


 Ilmupangan.blogspot.com/2010/04/kasus-vibrio-parahaemolyticus-di-dalam.html?m=1
myself-mypurple.blogspot.com/2012/01/2-bakteri-penyebab-travellers-disease.html?m=1
www.google.com/m?q=kasus+vibrio+parahaemolyticus+pada+seafood&client=ms-opera-mini&channel=new

praktikum bakteri "pewarnaan kapsul"

DASAR TEORI Beberapa jenis bakteri dan amoeba hijau-biru mengeluarkan bahan-bahan yang amat berlendir dan lengket pada permukaan selnya, melengkungi dinding sel. bila bahan berlendir tersebut kompak dan tampak sebagai suau bentuk yang pasti (bundar/lonjong) maka disebut kapsul. kapsul dan lendir tidaklah esensial bagi kehidupan sel, tetapi dapat berfungsi sebagai makanan cadangan, perlindungan terhadap fagositosis (baik dalam tubuh inang maupun dialam bebas) atau perlindungan terhadap dehidrasi. kemampuan menghasilkan kapsul merupakan sifat genetis, tetapi produksinya sangat dipengaruhi oleh komposisi medium tempat ditumbuhkannya sel-sel yang bersangkutan. Antanypina.blogspot.com/2013/06/bakteriologi-pewarnaan-kapsul.html?m=1

 METODE : BURRY GINS

TUJUAN : Untuk melihat kapsul bakteri

PRINSIP Kapsul pada kuman tidak dapat mengikat zat warna, sehingga pada pemberian cat tinta cina dan karbol fuchsin terlihat bulatan terang atau transparan dengan latar belakang gelap dan badan kuman berwarna merah dari fuchsin.

ALAT 1.       ose 2.       slide 3.       bunsen 4.       mikroskop

BAHAN 1.       sample “salmonela” 2.       karbol fuchsin 3.       tinta cina 4.       aquadest

Interpretasi hasil : KAPSUL                           : transparan

BADAN BAKTERI         : warna merah

PEMBAHASAN

Fungsi dari tinta cina yang digunakan pad pewarnaa burry gins yaitu untuk memberi warna latar belakang pada sediaan apabila dilihat pada mikroskop. sehingga kapsul bateri yang transparan dapat terlihat. sedangkan fungsi karbol fuchsin yaitu untuk memberi warna badan bakteri. sehingga dapat dibedakan antara badan dan kapsul bakteri.

KESIMPULAN

Berdasarkan praktikum, hasil yg didapat adl bakteri dg dinding transparan dan badanberwarna merah dg latar hitam

praktikum bakteri " BTA"

DASAR TEORI Bakteri tahan asam adalah bkeri yang memperahankan zat warna karbol-fuchsin, meskipun Dicuci dengan asam alkohol. mycrobakteria adalah bakteri tidak mudah diwarnai bakteri ini tahan terhadap penghilangan warna (diklorisasi) oleh asam atau alkohol dan karena itu dinamakan basil tahan asam. pada perbenihan buatan terlihat bentuk cuccosdan filamen. mycrobakteria tidak dapat di klasifikasikan sebagai gram positif atau gram negatif. Sifat tahan asam ini bergantung pada integritas struktur selubung berlilin. Analisbantul.blospot.com/2012/09/pewarnaan-bta/bakteri-tahan-asam.html?m=1

Metode : Zeihl Neelsen

Tujuan : Untak mengetahui sifat bakteri yang tahan terhadap asam

PRINSIP Dinding bakteri yang tahan asam mempunyai lapisan lilin dan lemak yang sukar ditembus cat. Oleh karena pengaruh fenol dan pemanasan maka lapisan lilin dan lemak itu dapatditembus cat basic fuchsin. pada waktu pencucian, lapisan lilin dan lemak yang terbuka akan merapat kembali. pada pencucian dengan asam alkohol warna fuchsin tidak dilepas. sedangkan pada bakteri tidak tahan asam akan luntur dan mengambil warna biru dari methylen blue.

ALAT       1.       ose      2.       slide      3.       bunsen      4.       mikroskop

BAHAN      1.       sputum “positif BTA”      2.       karbol fuchsin      3.       asam alkohol      4.       methylen blue      5.       aquadest       6.       oil imersi

Interpretasi hasil : BTA                   : Warna Merah

Non BTA         : Warna Biru

PEMBAHASAN Menurut ziehl neelsen mycrobakterium dan beberapa spesies nocardia pada dinding selnya Mengandung banyak zat lipoid (lemak) sehingga bersifat permiabel dengan pewarnaa biasa. bakteri tersebut tahan asam (+) terhadp pewarnaan tahan asam. pewarnaan tahan asam dapat digunakan untuk membantu menegakkan diagnosa tuberkulosis. pewarnaan tahan asam menggunakan larutan zeihl neelsen A (cat karbol fuchsin), zeihl neelsen B (alkohol asam : HCl 3% dalam metanol 95%) dan zeihl neelsen C (cat methylen blue). hasil pewarnaan maka bakteri tahan asam akan bewarna merah dan bakteri tidk tahan asam akan berwarna biru. Kelemahan dan kelebihan dari metode ziehl neelsen yakni : latar belakang bewarna biru terang, basil merah jelas, reagen terjangkau dan mudah didapat, fenol diecerkan 5% dan tidak dipanaskan karena pemanasan dilakukan pada proses pewarnaan sedian zat warna utama maka dari itu agak lama waktu yang dibutuhkan. Dahak yang diambil adalah dahak yang kental kunign kehijauan sebanyak 3-5 cc, dengan waktu pengambilan sebagai berikut :      ·         dahak sewaktu, penderita datang berobat dengan keluhan apa saja kepoliklinik      ·         dahak pagi, yang diambil besok paginya begitu bangun tidur      ·         dahak sewaktu, yang diambil sewaktu penderita mengandar dahak pagi tersebut. Ludah tidak dapat diperiksa karena ludah berasal dari kelenjar dala rongga mulu. biasannya dalam ludah tidak terdapat kuman BTA.

KESIMPULAN Karena sampel yang diperiksa adalah positif Tb, maka hasil yang didapat adalah positif yang ditandai dengan warna merah pada bakteri dengan latar berwarna biru

PERCOBAAN PENGENDAPAN PROTEIN DENGAN GARAM NETRAL

Hari, tanggal : Selasa, 18 juni 2013

DASAR TEORI Albumin adalah protein yang dapat larut dalam serum darah dan putih telur.  Garam Anorganik Yang digunakan dalam percobaan ini adalah ammonium sulfat. Hal ini terjadi karena ammonium sulfat memiliki tingkat lrutan yang lebih tinggi dai pada protein sehingga pada saat penambahan ammonium sulfat, ammonium sulfat akan melarut dalam air atau pelarutnya dan mendapatkan protein keluar, kembali dalam bentuk solidnya, sehingga terbentuklah protein yang terendapkan. http://eviaws.blogspot.com /2011/03/pengendapan-protein-oleh-garam.html

TUJUAN : Untuk mengetahui percobaan pengedapan protein dengan garam netral.

ALAT 1.      Ball pipet 2.      Pipet ukur 3.      Tabung reaksi 4.      Pipet tetes

BAHAN 1.      Albumin 2.      Ammonium sulfat kristal 3.      Aquadest 4.      Larutan asam sulfat jenuh

PRINSIP : Gram-garam netral mempunyai kemampuan untuk menarik air sehingga dengan demikian molekul-molekul protein kehilangan molekul airnya yang mengakibatkan molekul-molekul protein mengadakan agregasi dan akhirnya mengendap.

CARA KERJA Ø  Masukan 1 ml larutan protein kedalam tabung reaksi Ø  Tambahkan 2 ml ammonium sulfat jenuh (lihat perubahan) Ø  Tambahkan 1 ml aquadest (lihat hasilnya ada endapan/tidak) Ø  Tambahkan ammonium sulfat jenuh secukupnya (liht perubahan)

   

HASIL PENGAMATAN

No.	Asam amino dan Reaksi	Hasil Reaksi
1.	Reaksi I : larutan protein + ammonium sufat jenuh	putih susu
2.	Reaksi II : + Aquadest	berendapan
3.	Reaksi III : + ammonium sulfat jenuh	putih keruh tidak berendapan

PEMBAHASAN Larutan protein yang digunakan dalam praktikum ini adalah larutan putih telur (albumin) Albumin adalah protein yang dapat larut dalam air serta dapat terkoagulasi oleh panas. Garam anorganik yang digunkan dalam percobaan ini adalah ammonium sulfat, hal ini terjadi karena ammonium sulfat memiliki tingkat kelarutan yang lebih tinggi dari pada protein. Sehingga paa saat penambahan ammonium sufat kan melarut dalam air atau pelarutnya dan mendesak protein keluar, kembali dalam bentuk sendirinya, sehingga terbentuklah protein yang terendapan.

KESIMPULAN Pada uji percobaan pengendapan dengan garam netral didapatkan : ü  Pada reaksi I : putih susu ü  Pada reaksi II : Berandapan ü  Pada reaksi II : putih keruh tidak berendapan

Banjarbaru, 22 juni 2013

Dosen Pengampu                                             Praktikum

(Atni P, S.Si)                                                    (Donny S.)

JUDUL PERCOBAAN : Percobaan Aktivitas Enzim Invertase

HARI, TANGGAL : Selasa, 4 juni 2013

DASAR TEORI Enzim invertase pertama kali diisolasi dari ragi pada tahun 1960. Produksi invertase Secara Komersial sedemikian jauh hanya berasal dari ragi saccharomyces gerrevise dan saccharmomyces calbergensis. Invertase ada yang terletak diluar sel dan ada pula yang terletak diluar sel dan masih terikat erat pada sel bersangkutan. Enzim invertase menghidrolisis substrat berupa sukrosa pada gula bukan pereduksi produk hidrolisis berupa gula pereduksi yaitu glukosa dn fruktosa yang rasanya lebih manis dari pada sukrosa

TUJUAN :   Untuk mengetahui seberapa besar aktivitas enzim invertase sebagai katalis   dalam proses hidrolisis sukrosa pada sampel ragi.

PRINSIP :   Menghidrolisis sukrosa menjadi glukosa dan fruktosa.

ALAT 1.      Tabung reaksi 2.      Ball pipet 3.      Pipet ukur 4.      Rak tabung 5.      Kaca arloji 6.      Gelas ukur 7.      Beaker glass 8.      Batang pengaduk 9.      Water bath

BAHAN 1.      Ragi 2.      Sukrosa 1% 3.      Maltosa 1% 4.      Pereaksi Bennedict

HASIL

NO	REAKSI	PENGAMATAN
		AWAL REAKSI	AKHIR REAKSI
1.	Lar. sukrosa 1% + ragi, dipanaskan pada WB 40⁰C	Putih bening	Putih keruh dn terdapat endapan
2.	Lar. maltosa 1% + ragi, dipanaskan pada WB 40⁰C	Putih bening	Putih keruh dan terdapat endapan
3.	Lar. Bennedict + ragi, dipanaskan pada WB 40⁰C	Biru	Biru keruh dan terdapat endapan

PEMBAHASAN Enzim invertase yang terdapat dalam ragi dapat menhidrolisis sukrosa menjadi glukosa Dan Fruktosa. bila larutan ragi terlebih dahulu dipanaskan maka, enzim akan rusak dan tidak dapat menhidrolisis sukrosa. untuk menunjukan bahwa hidrolisis telah sempurna maka, terhadap hidrosilat dilakukan uji boffoed. apabila positif ada endapan merah bata sedangkan negatif ada endapan tapi warna tetap. Pada praktikum tidak terdapat pada hasilnya merah bata tapi, hanya terdapat endapan dan warna hanya menjadi keruh. mungkin karena reagen yng sudah rusak (kontaminasi) atau dari sampel yang kurang baik.

KESIMPULAN Dari hasil praktikum didapatkan -          Tabung pertama : sampel + lar. sukrosa, terjadi endapan dengan warna putih keruh di akhir reaksi -          Tabung kedua : sampel + lar. maltosa, terjadi endapan dengan warna putih keruh di akhir reaksi -          Tabung ketiga, sampel + bennedict, terhadi endapan dengan warna biru keruh di akhir reaksi

Banjarbaru, 7 juni 2013

Pembimbing Praktikum                               Praktikan

(Atni P, S.Si)                                               (Donny S.)